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Beschreibung
Karteikarten von nataia elizabeth Cv, aktualisiert vor 9 Monate
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Erstellt von nataia elizabeth Cv
vor 9 Monate
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| Frage | Antworten |
| ¿Qué métodos se emplean para realizar cortes histológicos en fresco y cuáles son sus aplicaciones en la investigación histológica? | Criostato: Este equipo permite realizar cortes histológicos en tejidos frescos congelados a temperaturas muy bajas. Los tejidos se congelan rápidamente y se cortan en secciones muy delgadas utilizando una cuchilla afilada. Este método es especialmente útil para preservar la morfología celular y la distribución de componentes enzimáticos y proteicos. Vibrátomo: El vibrátomo utiliza vibraciones ultrasónicas para seccionar tejidos en secciones delgadas y uniformes. Es útil para obtener cortes en fresco de tejidos blandos y sensibles, como el cerebro o el tejido adiposo, preservando la estructura celular y permitiendo su análisis inmediato. |
| ¿Cuál es la importancia de la estandarización de técnicas en la obtención de preparados histológicos para garantizar resultados reproducibles y precisos? | Consistencia Reproducibilidad Comparabilidad Eficiencia Calidad del dato |
| ¿Qué precauciones se deben tomar durante el proceso de preparación de muestras histológicas para evitar artefactos? | Fijación adecuada Manipulación suave Deshidratación y inclusión adecuadas Corte preciso Coloración adecuada Limpieza de equipos Inspección cuidadosa |
| ¿Cómo se lleva a cabo el proceso de observación y análisis de preparados histológicos utilizando técnicas de microscopía óptica? | Preparación del microscopio Colocación de la muestra Selección de aumento Observación inicial Enfoque fino Análisis detallado Captura de imágenes Interpretación de resultados Registro de hallazgos |
| ¿Qué técnicas se utilizan para la contrastación y montaje de preparados histológicos después de la coloración? | Contrastación: Se realiza mediante el lavado de las secciones de tejido después de la coloración para eliminar el exceso de tinte. Puede incluir la inmersión de las secciones en agua o soluciones tampón para eliminar los tintes no unidos a las estructuras celulares. El objetivo es mejorar la claridad y la definición de las estructuras teñidas para su observación microscópica. Montaje: Después de la contrastación, las secciones de tejido se montan sobre portaobjetos de vidrio. Se utilizan medios de montaje, como bálsamo de Canadá o resinas sintéticas, para adherir las secciones al portaobjetos y preservarlas para su almacenamiento a largo plazo. Finalmente, se cubren las secciones con un cubreobjetos transparente para protegerlas y permitir su observación microscópica. |
| ¿Cuáles son las diferencias entre la coloración con tinciones básicas y ácidas en la visualización de estructuras histológicas? | Tinciones básicas: Se unen preferentemente a estructuras ácidas o negativamente cargadas en las células, como el núcleo y las membranas celulares. Ejemplos de tinciones básicas son la hematoxilina, que tiñe el núcleo de color azul oscuro, y el azul de metileno, que tiñe citoplasma y fibras colágenas de color azul. Son útiles para resaltar estructuras nucleares y citoplasmáticas. Tinciones ácidas: Se unen preferentemente a estructuras básicas o positivamente cargadas en las células, como las proteínas y los citoplasmas. Ejemplos de tinciones ácidas son la eosina, que tiñe el citoplasma y las fibras de colágeno de color rosa, y la picrosirius, que tiñe fibras de colágeno de diferentes colores dependiendo de su organización. Son útiles para resaltar estructuras citoplasmáticas y fibrilares. |
| ¿Cuál es la función del microtomo en la obtención de cortes histológicos y qué tipos de microtomos son comunes en el laboratorio? | Microtomo de rotación: Utiliza una cuchilla afilada que se desplaza rotativamente sobre el bloque de tejido para producir cortes precisos y delgados. Es uno de los microtomos más comunes y versátiles en la histología. Microtomo de deslizamiento: Emplea una cuchilla móvil que se desliza horizontalmente sobre el bloque de tejido para realizar cortes. Este tipo de microtomo es más adecuado para cortes gruesos y se utiliza a menudo en la preparación de muestras para la microscopía electrónica. |
| ¿Qué técnicas se emplean para la inclusión de tejidos en parafina antes de la microtomía en la preparación de cortes histológicos? | Inclusión en parafina caliente: Los tejidos se infiltran gradualmente con parafina caliente, que se solidifica formando bloques sólidos que contienen el tejido. Este método es rápido y ampliamente utilizado en laboratorios histológicos. Inclusión en parafina mediante solventes orgánicos: Los tejidos se deshidratan y aclaran en una serie de solventes orgánicos como xileno o tolueno, y luego se infiltran con parafina derretida. Este método es más lento pero puede mejorar la preservación de las muestras. |
| ¿Cuál es la importancia de la deshidratación en la preparación de muestras histológicas y cómo se lleva a cabo este proceso? | es importante porque elimina el agua de los tejidos, lo que permite una mejor penetración de los agentes de inclusión (como la parafina) y facilita la conservación a largo plazo de las muestras. Además, la deshidratación ayuda a prevenir la formación de cristales de hielo durante el proceso de congelación y microtomía. |
| ¿Qué tipo de agentes se utilizan comúnmente en la fijación de tejidos para preparados histológicos y cuáles son sus mecanismos de acción? | Formaldehído (formalina): Actúa formando enlaces cruzados entre las proteínas y los ácidos nucleicos del tejido, estabilizando su estructura y evitando la desnaturalización y descomposición de las células. Glutaraldehído: Funciona de manera similar al formaldehído, creando enlaces cruzados con las proteínas del tejido para estabilizar su estructura y preservar la ultraestructura celular, siendo especialmente útil para la microscopía electrónica. |
| ¿Cuáles son las principales etapas del proceso de fijación en la obtención de preparados histológicos? | Fijación Lavado o aclaramiento Deshidratación Inclusión Microtomía Montaje Coloración Montaje final |
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