O exame parasitológico é um teste
realizado com amostras de fezes. O
objetivo principal da análise é
diagnosticar parasitas intestinais. Para
isso, são utilizados critérios morfológicos.
Ou seja, com o material coletado, a forma
dos seres vivos é procurada e estudada
Exame macroscópico
Objetiva analisar as características
macroscópicas das fezes, bem como odor,
a consistência, a presença de muco,
sangue, e até mesmo a presença de restos
de vermes adultos - como no caso das
proglótes grávidas de Taenia sp. - Alguns
vermes aultos PODEM* ser identificados
em sua íntegra também, como no caso do
Ascaris lumbricoides e do Enterobius
vermicularis
MÉTODO DO ÁCIDO ACÉTICO GLACIAL: É para
identificação de proglotes grávidas de Taenia
PRINCÍPIO: Clarificação das proglótes de
Taenia pela imersão em ácido Acético Glacial
FINALIDADE: Permite a diferenciação das
espécies de Taenia entre T. solium e T. saginata
TAMIZAÇÃO: É um método de diagnóstico
Parasitológico para a teníase
PRINCÍPIO: É uma operação mecânica que ocorre por
separação através de uma superfície perfurada
permitindo a segregação de materiais sólidos. Em
síntese é uma técnica fundamentada na peneiração do
material biológico através de uma peneira metálica com
o auxílio de uma torneira de água corrente
FINALIDADE: É utilizado para a separação e a
identificação de proglótes grávidas de Taenia sp.
Exame microscópico
Objetiva analisar e identificar de ovos ou
larvas de helmintos, cistos, trofozoítos
ou oocistos de protozoários por meio da
análise microscópica do material fecal
do paciente
Métodologias de EPF's em análise microscópica
Métodos
Quantitativos
São métodos que permitem a contagem de ovos
nas fezes, permitindo, assim verificar a
intensidade do parasitismo
MÉTODO DE BABOSA:
PRINCÍPIO:Permite a contagem de ovos nas fezes, permitindo, assim
verificar a intensidade do parasitismo através do cálculo quantitativo
dos achados nas fezes contra o peso corporal do paciente
FINALIDADE: Contagem de ovos de helmintos,
preferencialmente ovos de Schistosoma mansoni
MÉTODO DE KATO-KATZ:
PRINCÍPIO: Permite a contagem de ovos nas fezes, permitindo, assim
verificar a intensidade do parasitismo através do cálculo quantitativo dos
achados nas fezes contra o peso corporal do paciente
FINALIDADE: Contagem de ovos de
helmintos, preferencialmente ovos
de Schistosoma mansoni
MÉTODO DE BELL:
PRINCÍPIO: Permite a contagem de ovos nas fezes, permitindo, assim
verificar a intensidade do parasitismo através do cálculo quantitativo
dos achados nas fezes contra o peso corporal do paciente
FINALIDADE: Contagem de
ovos de Schistosoma
mansoni
MÉTODO DE
STOLL-HAUSHER:
PRINCÍPIO: Permite a contagem de ovos nas fezes, permitindo, assim
verificar a intensidade do parasitismo através do cálculo quantitativo
dos achados nas fezes contra o peso corporal do paciente
FINALIDADE: Contagem de ovos de ancilostomídeos.
(Ancylostoma duodenale e Necator americanus)
Métodos Qualitativos
São os mais utilizados, demostrando a presença
das formas parasitárias sem quantifica- lás, são
classificados de acordo com o princípio do método
MÉTODO BLAGG (MIFC):
PRINCÍPIO: Sedimentação por centrifugação
de fezes que foram conservadas em MIF
FINALIDADE: É indicado preferencialmente para a pesquisa de
cistos de protozoários e ovos leves de helmintos
MÉTODO DE HOFFMANN,
PONS E JANER:
PRINCÍPIO: Sedimentação espontânea
FINALIDADE: Permite o encontro de ovos e
larvas de helmintos e de cistos de protozoários,
sendo mais indicado para a pesquisa e
identificação de ovos com maior densidade
MÉTODO DE FAUST COLS:
PRINCÍPIO: Flutuação por centrifugação em sulfato de zinco
FINALIDADE: É indicado para a pesquisa de
protozoários, permitindo também o encontro de ovos
leves de helmintos.
MÉTODO DE RUGAI e
MÉTODO DE
BAERMANN-MORAES :
PRINCÍPIO: Concentração de larvas por
hidrotropismo e termotropismo
FINALIDADE: É indicado para a
pesquisa de larvas de Stongyloides
stercoralis
MÉTODO DE WILLIS:
PRINCÍPIO: Flutuação espontânea em solução saturada de cloreto de sódio
FINALIDADE: É indicado para a
pesquisa de ovos leves de
helmintos (Ancilostomídeos)
MÉTODO DE FITA GOMADA
(GRAHAM):
PRINCÍPIO: Imprint da região de pesquisa do parasito
Enterobius vermicularis - região anal e perianal - por meio do
uso de uma fita gomada, também denominada SWAB-Anal
FINALIDADE: Se destina a evidenciação de ovos de
Enterobius vermicularis
´MÉTODO DE ANALISE
DIRETO A FRESCO:
PRINCÍPIO: É a análise do material fecal do paciente em sua forma
mais natural e sem adição de conservantes ou coloração, feita de
forma direta enquanto o mesmo encrontra-se ainda fresco e
portanto deve ser feita a pesquisa dentro de 30min após a coleta
FINALIDADE: Permite a pesquisa de diferentes parasitos nas fezes,
sendo mais indicada para a pesquisa de protozoários e a análise da
motilidade de trofozoítos
MÉTODO DE RITCHIE:
PRINCÍPIO: Sedimentação por centrifugação de fezes que foram conservadas em formol 10%
FINALIDADE: É indicado preferencialmente para a pesquisa
de cistos de protozoários e ovos leves de helmintos.
Coleta de amostras e
orientações ao paciente
As amostras podem ser coletadas a partir de
qualquer evacuação do dia, tendo sido
emitidas espontaneamente e sem que haja
contaminação de urina ou solo. O recipiente
de coleta deve estar limpo, seco e
preferencialmente apresentar uma boca
larga. Cada amostra deve seguir com o nome
completo do paciente, seu respectivo número
de identificação, sua idade, sexo e
identificação clínica
O paciente DEVE ser orientado para que cuide para
NÃO CONTAMINAR as fezes com água do vaso
sanitário ou urina, defecando
PREFERENCIALMENTE sobre um local LIMPO E
SECO, previamente forrado com papel ou mesmo
diretamente ao frasco de coleta. Caso não haja a
possibilidade do material ser coletado diretamente
no frasco de coleta, o mesmo devera ser
transportado para o frasco com o auxílio de uma
espátula. Em geral a quantidade de fezes indicada
para a coleta é em torno de 1/3 dos frascos
comumente cedidos pelo laboratório, quais
possuem cerca de 80ml de capacidade. É
importante informar também a necessidade de que
caso haja a presença de SANGUE, MUCO ou mesmo
fases DIARREICAS nas fezes, estas partes DEVEM
ser IGUALMENTE coletadas, pois são elementos
IMPORTANTES PARA A ANÁLISE DA AMOSTRA
Também é importante salientar que as amostras
coletadas DEVEM ser transportadas ao laboratório O
MAIS RÁPIDO POSSÍVEL, e caso não seja possível
fazer o transporte de imediato, o material portanto
DEVERA SER MANTIDO SOB REFRIGERAÇÃO
CONSTANTE