Tinción Eosina & Hematoxilina

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Tinción Eosina & Hematoxilina
  1. La tinción hematoxilina-eosina corresponde a la mezcla de hematoxilina y eosina. La tinción hematoxilina y eosina es el método más popular de tinción utilizado en histología y medicina diagnostica.
    1. El método supone la aplicación de la tinción de hematoxilina, que tiñe estructuras acidas (basófilas) en tonos azul y purpura, y el uso de eosina que tiñe componentes básicos (acidófilos) en tonos de color rosa.
    2. HEMATOXILINA
      1. Es un producto natural que al ser oxidado constituye una substancia de color morado oscuro denominado hemateína.
        1. Se utiliza en histología para teñir los componentes aniónico (ácidos) de los tejidos, a los que da una coloración violeta. Tiñe intensamente los núcleos de las células, dado que estos contienen ácidos nucleicos ricos en radicales ácidos.
          1. Tal como se obtiene de la planta e incluso luego de sufrir el proceso de oxidación, su capacidad de tinción es muy limitada. Por lo tanto, debe combinarse con iones metálicos, especialmente las sales de hierro (III) o aluminio (II), que actúan como mordientes.
            1. Si bien la hematoxilina es una sal neutra ser denominada como un colorante básico, ya que el componente cromógeno reside en el complejo catiónico (básico) de la misma. Es de notar que la tinción histológica por hematoxilina no indica tanto la constitución química de los componentes celulares, sino la densidad de cargas eléctricas negativas de los mismos.
      2. EOSINA
        1. Se trata de una solución de eosina. Colorante ácido. Utilizado como colorante de contraste de la hematoxilina en la tinción Hematoxilina-Eosina.
          1. Es el colorante ácido más ampliamente usado, debido a que con una diferenciación adecuada, puede teñir citoplasmas de diferentes tipos de células y teñir diferentes tipos de fibras del tejido conectivo.
            1. Hay varios tipos de eosinas, todas ellas son xantenos y de ellas la más común es la Eosina
              1. Y ó simplemente eosina, que es soluble en agua y alcohol. Se usa en bajas concentraciones : 0.5 a 1.0 % en agua destilada.
                1. La tinción con Eosina ocurre en el frasco respectivo y en los siguientes frascos con alcohol ocurre una leve diferenciación (extracción del exceso de colorante).
        2. PROCEDIMIENTO/TPECNICA
          1. Sumergir los preparados histológicos en sustituto de xilol para eliminar los excesos de parafina (importante: el xileno es un hidrocarburo aromático derivado del benceno; no es un alcohol, y es muy tóxico y cancerígeno), el NEO-CLEAR ejerce la función de aclarante de parafina sin la toxicidad de xilol.
            1. • Luego pasan por una serie de alcoholes etanol en concentración creciente para rehidratar la muestra 70%, 80%, 90% y 100%.
              1. • Se lava en agua para eliminar exceso de alcohol etanol.
                1. • Se sumerge en hematoxilina por 5 minutos.
                  1. • Luego se lava en agua para eliminar excesos.
                    1. • Se pasa rápidamente por alcohol ácido (sumergir).
                      1. • Se lava nuevamente en agua corriente, chorro débil.
                        1. Se pasa rápidamente por agua amoniacal o alcohol amoniacal (sumergir) hasta alcanzar un azulamiento.
                          1. Se pasa por otra serie de alcoholes, esta vez en orden creciente (70°, 95° y 100°).
                            1. • Se sumerge 4 o 5 minutos en eosina.
                              1. • Se lava nuevamente en agua corriente, chorro débil.
                                1. • Se pasa por otra serie de alcoholes, esta vez en orden creciente (70°, 95° y 100°) para deshidratar la muestra y que se puede realizar el montaje con un pegamento no soluble en agua.
                                  1. • Finalmente se deja remojar 15 inmersiones en 2 sustitutos de xilol, antes de realizar el montaje final.
                                  2. HISTOQUÍMICA
                                    1. Incluiremos dentro de las técnicas histoquímicas a aquellas que supongan una reacción química en la que intervienen moléculas pertenecientes al propio tejido (trataremos la detección de glúcidos mediante lectinas y la inmunohistoquímica en apartados diferentes a éste, aunque algunos autores las incluyen como técnicas histoquímicas).
                                      1. El objetivo de la histoquímica es poner de manifiesto una molécula o familia de moléculas presentes en una sección histológica y estudiar su distribución tisular "in situ".
                                      2. Vamos a dividir las técnicas histoquímicas en dos grupos: reacciones químicas e histoquímica enzimática.
                                        1. Las reacciones químicas consisten en la modificación química de moléculas del tejido para posteriormente poder colorearlas.
                                          1. Existen técnicas histoquímicas para detectar glúcidos, proteínas y nucleótidos. La técnica histoquímica más empleada es la reacción de PAS (Periodic Acid Schiff).
                                            1. Se utiliza para la detección de hidratos de carbono, libres o conjugados, cuando están en cantidades relativamente grandes en los tejidos.
                                              1. La modificación química del tejido consiste en la oxidación mediante el ácido periódico de los enlaces entre los carbonos próximos que contienen grupos hidroxilos.
                                                1. Esto provoca la formación de grupos aldehídos que serán reconocidos por el reactivo de Schiff, el cual se combinará con ellos para dar un color rojizo brillante.
                                          2. La histoquímica enzimática o histoenzimología se basa en la capacidad que tienen algunos enzimas del tejido de mantener funcional su centro activo tras el proceso de fijación.
                                            1. Estos enzimas y las células que los poseen se ponen de manifiesto mediante una reacción enzimática que convierte a unos sustratos solubles e incoloros en productos insolubles y coloreados.
                                              1. Los sustratos son específicos para el enzima y los productos se depositan en el lugar preciso donde se produjo la reacción, es decir, donde se localiza el enzima.
                                                1. Hay que tener en cuenta que cuando queremos detectar una actividad enzimática es recomendable no incluir el material en medios como la parafina puesto que la deshidratación y la temperatura elevada pueden dañar la conformación de la enzima y por tanto la actividad de su centro activo.
                                                  1. Las enzimas que se pueden detectar son variadas como las peroxidasas, fosfatasas, deshidrogenasas, diaforasas, acetilcolinesterasa, etcétera
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