Existen varias pruebas para identificar
glúcidos o clasificarlos
Prueba de Molish
Prueba de Benedict
Prueba de Barfoed
Prueba de Bial
Prueba de Seliwanoff
Reacción del lugol
Prueba de Fheling
Glucosa en sangre
Considerada reacción universal ya que permite detectar la presencia de cualquier carbohidrato.
Fundamento: El ácido sulfúrico concentrado actúa como hidrolizante y deshidratante en los monosacáridos formando compuestos furfuralicos, que a su vez se condensan con el reactivo de Molish, causando la formación de un anillo de color rojo-violeta en la interface.
Resultados
Positivo: formación de anillo rojo-violeta en la interface.
Alta concentración: precipitado rojo
Negativo: No hay cambio de coloración
Perimite reconocer azúcares reductores, (los que poseen un grupo OH anomérico libre)
Fundamento: Reacción de óxido-reducción en la que el grupo carbonilo de los aldehídos se oxida a ácido y reduce la sal de cobre II (presente en el reactivo), en medio alcalino, a óxido de cobre I, el cual forma un precipitado de color rojo ladrillo.
Resultados
Negativo: No hay cambio de coloración (se mantiene azul)
Positivo: Presencia de precipitado color naranja o rojo ladrillo
Perimite reconocer azúcares reductores y diferenciar a los azúcares monosacáridos de los disacáridos
Fundamento: Reacción de óxido-reducción basada en la reducción de cobre (II) a cobre (I) (En forma de óxido), el cual forma un precipitado color rojo ladrillo.
Resultados
Positivo:
Monosacáridos: Rojo
Disacáridos: Azul (la reacción tarda más tiempo)
Negativo: No hay cambio de coloración
Indentifica pentosas y ciertos ácidos urónicos (que al calentarse con ácidos fuertes forman pentosas)
Fundamento: En medio ácido y alta temperatura, las pentosas y hexosas se deshidratan formando furfural e hidroximetilfurfural. En presencia de ión férrico y orcinol, el furfural se condensa formando un complejo coloreado.
Resultados
Negativo: No hay cambio de coloración
Positivo:
Pentosas: Azul- verde
Hexosas: Café o café rojiza
Identificación de cetosas
Fundamento: En medio ácido concentrado las cetosas se deshidratan más rápido que las aldosas, produciendo derivados del furfural que forman complejos con el resorcinol (del reactivo de Seliwanoff)
Resultados
Positivo: Color rojo cereza
Negativo: No hay cambio de coloración
Detecta la presencia de polisacáridos
Fundamento: Se basa en la formación de un complejo entre la molécula de amilosa y el ión I3- . El ión se introduce en la hélice de la amilasa formando un producto azul o negro
Resultados
Negativo: No hay cambio de coloración
Positivo: Color azul o negro según la concentración
Determina la presencia de azúcares reductores y aldosas.
También útil para determinar la hidrólisis de almidón.
Fundamento: El carbonilo de los aldehídos se oxida a ácido y reduce la sal de cobre en medio alcalino a óxido de cobre, formando un precipitado de color rojo.
Útil para determinar la hidrólisis del almidón realizada con ácidos diluidos o enzimas (amilasa)
Resultados
Negativo: No hay cambio de coloración
Positivo: Precipitado color rojo
Pruebas para determinar la cantidad de azúcares en sangre mediante reactivos enzimáticos
Fundamento: La enzima glucosa oxidasa oxida la D-glucosa a ácido D-glucónico y la peroxidasa descompone el peróxido de hidrógeno formado en la reacción anterior, lo que reacciona con fenol y 4 aminofenazona generando un complejo de color rosa.
La intensidad del color indica la concentración de glucosa.
Para obtener un resultado cuantitativo se lleva las muestras al espectrofotómetro con absorbancia de 505nm y se aplica la fórmula.