Estado inflamatorio de la
conjuntiva, con hiperemia
conjuntival (dilatación de los
vasos sanguíneos) o con
hemorragia subconjuntival.
No gonocócica
Ocasionada frecuentemente por S. aureus, S. pneumoniae y H.
influenzae biogrupo aegyptius, Moraxella lacunata.
Gonocócica
Producida por N. gonorrhoeae, afecta principalmente a los adultos que se contagian
por un contacto sexual o por autoinoculación (genital-mano-ojo).
De inclusión
Causada por Chlamydia trachomatis serotipos D hasta la K, se produce en los adultos por
autoinoculación y en los neonatos durante el paso por el canal de parto infectado.
Alérgica
Producida por una reacción de hipersensibilidad tipo I o anafiláctica frente a
determinados antígenos, como pólenes que son transportados por el aire.
Crónica
Se caracteriza por exacerbaciones y remisiones durante meses o años, puede presentarse
hiperemia conjuntival con secreción acuosa, mucoide o sin ella.
Tracoma
Conjuntivitis crónica producida por C. trachomatis serotipos, cursa con
hipertrofia folicular conjuntival, neovascularización corneal que pueden
conducir a una pérdida irreversible de la visión.
Queratitis
Inflamación de la córnea producto de la aplicación de medidas quirúrgicas con fines
curativos, tambien puede ser caausada por Pseudomonas aeruginosa, S. aureus o
Streptococcus del grupo viridans, levaduras como Candida albicans.
Blefaritis
Inflamación del borde palpebral con hiperemia, engrosamiento y
formación de escamas o costras o úlceras superficiales.
Staphylococcus aureus
Orzuelo
Induración redondeada y dolorosa localizada en el folículo de la pestaña
o en una o más glándulas de Zeis, Moll o de Meibomio.
Staphylococcus aureus
CONSIDERACIONES PREANALÍTICAS
SOLICITUD DE ANALISIS
Nombres y apellidos del paciente
Edad del paciente
Número de historia clínica
Diagnóstico previo
Código y firma del facultativo
que realiza la peticioón
Código de
destino
Determinaciones analíticas
que se solicitan
INDICACIONES PREVIAS
No aplicarse
tratamientos tópicos.
No estar recibiendo
tratamientos antimicrobianos
No lavarse los ojos para el momento
de la obtención de la muestra.
No usar lentes de contacto
TOMA DE MUESTRA
1. Verificar los datos del paciente
2.Verificar condiciones de aceptación o rechazo de pacientes.
3. Incación del procedimiento al paciente.
4. Rotular el material a emplear para la recolección de la
muestra, frente al paciente.
5. Colocar al paciente bajo una buena fuente de luz.
6. Llimpiar posibles restos de pus o secreciones del conducto auditivo externo con
hisopo humedecido en solución fisiológica estéril y descartar.
7.Humedecer dos hisopos en solución salina fisiológica estéril y rotar
suavemente cada hisopo en el ángulo interno del ojo
8.Con un hisopo hacer un frotis circular no mayor a un cm, de diámetro en una lámina portaobjeto.
9. El otro hisopo se colocará en un medio de transporte adecuado.
CONSIDERACIONES
ANALITICAS
Tinción de Gram,
Tinción diferencial, que permite observar y clasificar la
bacterias segun su coloración en gram positivas y gram
negativas.
Observar la presencia de células epiteliales y
microorganismos intra o extracelulares,
presencia de células inflamatorias.
Tinción de Hansel
Permite la investigación de polimorfonucleares
eosinófilos, que orientan a un proceso alérgico
Tinción de Giemsa
Para la observación de cuerpos de inclusión
intracitoplasmáticos, sugestivos de infección
clamidial.
Cultivo
Proceso de crecimiento de microorganismos
mediante la toma de bacterias de un sitio de
infección por métodos de recolección de
muestra y crecimiento en un ambiente
artificial en el laboratorio ( in vitro).
Cultivar cada ojo por separado en una misma placa AS y ACHs
Incubar a 36 °C, bajo condiciones microaerófilas por 24 h hasta 72 h.
Revisar los cultivos cada 24 horas, hasta las 72 horas
Inspeccionar las placas de AS y ACH, estimar el número de cada microorganismo en cada placa.
El desarrollo de moderado o abundante crecimiento bacteriano, tercer o cuarto cuadrante de la placa
respectivamente, podría indicar una etiología bacteriana de la infección
Al crecimiento de escasas colonias de algún patógeno, se le debe dar importancia.
Exámen en fresco con
Solución Salina Fisiológica
Se emplean para observar la movilidad, tamaño, forma
de agrupación de los microorganismos en su estado
natural.
Colocar una gota de secreción mas
una gota de solución salina.
Cubrir con un cubreobjetos y
proceder al análisis microscópico
CONSIDERACIONES POS
ANALÍTICAS
Los resultados que se pueden reportar al analizar una muestra de secreción
ocular, dependiendo de técnica usada pueden ser:
Exámen en fresco con
Solución Salina Fisiológica
Se puede reportar por campo las
siguientes estructuras
Bacterias
Leucocitos
Células
epiteliales
Esporas
Levaduras
Tinción de Gram
Describir la morfología de todos
los microorganismos con
significancia clínica.
Así mismo, registrar si los
microorganismos se encuentran intra
o extracelularmente y la presencia de
células inflamatorias.
Tinción de Hansel
Reportar los eosinófilos
presentes por campo
Tinción de
Giemsa
Los hallazgos positivos se
reportan: “Se observaron
cuerpos de inclusión
sugestivos de Chlamydia
trachomatis”.
Cultivo
Reportar la cantidad (escasa, moderada o abundante) del
microorganismo aislado en cultivo puro o aquel que se le haya dado
valor por su crecimiento predominante.
Si están presentes microorganismos indígenas
que son contaminantes para el caso, incluir el
siguiente comentario:
“Presencia de microbiota indígena conjuntival” o
“Desarrollo de microbiota habitual de la región”.